Introduction
인체의 약 16%를 차지하는 피부는 각질 아래 표피, 진피, 피하조직으로 구성되어 있으며, 외부 유해인자들로부터 인체를 보호하는 중요한 역할을 한다(Yang et al. , 2010). 그러나 나이가 들어감에 따라 각종 오염물질 및 스트레스에 의해 피부 세포들이 손상을 입게 되고, 세포 증식이 억제되어 피부의 탄력성과 윤택성이 감소되고, 기미, 주근깨 등 피부 색소 침착 및 주름이 생기게 된다(Yang et al ., 2010; Lee et al ., 2014a). 이와 같은 피부 노화 현상(skin aging)은 피부 각질층의 구조적, 기능적 변화로 인한 것으로, 그 요인에 따라 외인성 노화(extrinsic aging)와 내인성 노화(intrinsic aging)로 구분할 수 있다(Lee et al ., 2014a; Yoo et al ., 2010). 외인성 노화는 자외선 및 스트레스 등과 같은 외부 요인에 의한 피부 노화를 말하며, 내인성 노화는 나이가 들어감에 따라 피부의 생리적 기능이 저하되어 자연스럽게 나타나는 현상이다(Yoo et al ., 2010).
피부의 진피 층은 피부의 물리, 화학적 성질을 결정하는 역할을 하며, 진피의 대부분은 콜라겐(collagen)과 탄력섬유(elastic fiber)가 차지한다(Kim et al ., 2000). 교원질 즉 콜라겐과 탄력섬유는 피부의 기계적 견고성, 조직의 결합력 및 탄력성 등에 관여한다(Jeon & Kang, 2009; Kim et al ., 2000). 그 중 콜라겐은 진피의 90% 이상을 차지하고 있으면서 외부로부터의 자극에 대해 피부를 보호하는 역할을 하는데, 이러한 콜라겐이 내부 또는 외부로부터 자극을 받게 되면 구조 변화, 생합성량 감소 등을 겪는다. 그로 인해 피부 진피 층에 존재하는 세포외 기질이 손상되어 피부 주름이 만들어지게 된다(Jeon & Kang, 2009).
콜라겐은 전구체(procollagen) 형태로 합성된 후 세포 밖으로 배출되어 pN collagen, pC collagen 등의 중간 산물을 거쳐 합성이 되며, 현재까지 19 종류의 콜라겐이 밝혀져 있다(Scharffetter-Kochanek et al ., 2000; Lee et al ., 2014b). 콜라겐의 분해와 관련된 다양한 메커니즘 중 하나는 전사인자인 activating protein-1 (AP-1)에 의한 것으로, AP-1에 의해 유도되는 기질 금속 단백질 분해 효소(matrix metalloproteinases, MMPs)에 의해서 세포외 기질과 프로콜라겐 및 콜라겐으로 분해된다(Scharffetter-Kochanek et al ., 2000; Yoo et al ., 2010). MMPs는 아연 이온을 필요로 하는 단백질 분해 효소로 세포외 기질 단백질을 분해하는 효소이며 지금까지 24 종류가 알려져 있다(Pyun et al ., 2012; So et al ., 2008). MMPs 중 MMP-1 (collagenase)은 콜라겐 타입 I, III을 분해하고, MMP-3 (stromelysin-1)은 콜라겐 타입 IV을 분해하며 MMP-9 (gelatinase B)는 콜라게나아제에 의해 분해된 산물을 더 작게 가수분해한다(Pyun et al ., 2012).
최근 들어 피부 주름 개선에 효과가 있는 화장품에 대한 관심이 높아지면서 기능성 화장품 소재를 탐색하기 위한 연구가 활발히 이루어 지고 있다(Kim et al ., 2009). 그 중 단백질 가수분해물로부터 얻어진 펩타이드는 아미노산 서열이 가지는 배열 및 구조에 따라 생체 내 혹은 피부에서 생리활성을 가지게 되어 생물학적 제제로서의 산업적 응용 가능성이 높다(Jung et al ., 2015; Kim et al ., 2009; Kim et al ., 2016). 또한 최근에는 재조합 과정을 통해 합성된 펩타이드 연구가 활발히 이루어 지고 있는 추세이다(Lupo & Cole, 2007). 따라서 본 연구에서는 기능성 화합물-펩타이드 융합체를 이용한 신규 기능성 화장품 소재를 개발할 목적으로 항노화 기능성 물질-나이아신 펩타이드 융합체가 주름 개선 및 피부 에너지 대사에 미치는 영향을 확인하고자 하였다.
Methods
1. 실험재료
1) 시약 및 기기
실험에 사용된 3-(4,5)dimethyl-2 thiazolyl)-2,5-diphny-2H-tetra-zolium bromide (MTT)는 Sigma-Aldrich (USA)에서 구입하였으며, 94.5% 에탄올(ethanol), 클로로폼(chloroform), 포름알데히드(formaldehyde)는 SAMCHUN (Korea)의 제품을, 이소프로판올(isopropanol)은 JUNSEI CHEMICAL (Japan)의 제품을 사용하였다. 시료의 흡광도는 ELISA microplate reader (Model 680; Bio-Rad Laboratories, Japan)를 사용하여 측정하였다.
2) 펩타이드 융합체 제조
본 실험에 사용된 나이아신 디펩타이드 융합체는 A&PEP (Korea)에서 공급받아 사용하였다. N-peptide1 (molecular weight: 311.29 Da)과 N-peptide2 (molecular weight: 313.33 Da)는 피부 미백 기능성 물질로 잘 알려진 나이아신아미드에 2종의 dipeptide를 각각 결합시킨 신규 융합 펩타이드다.
3) 세포주 배양
본 실험에서 사용된 HaCaT (human keratinocyte cell line) 세포는 Dr. N. Fusenig (German Cancer Research Center, DKFZ, Germany)로부터 분양 받았으며, human fibroblast 세포는 American Type Culture Collection (ATCC; Rockville, USA)에서 분양 받아 사용하였다. 세포는 10% FBS와 1% antibiotics가 포함된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM; HycloneTM, USA) media를 사용하였으며, 5% CO2, 37℃ incubator에서 배양하였다. 매 48 h 마다 trypsin-EDTA (HycloneTM)를 이용하여 세포를 부유상태로 만든 다음 세포를 1×106 cells/mL로 분주하여 계대 배양하였다.
2. 실험방법
1) MTT assay
12 well plate에 HaCaT 세포를 1×106 cells/well로 분주한 다음 5% CO2, 37℃ incubator에서 24 h 동안 배양하였다. 그 후, 시료 N-peptide1과 N-peptide2를 농도별(100 μg/mL, 500 μg/mL, 1 mg/mL)로 처리한 후 24 h 동안 CO2 incubator에서 배양하였다. 5 mg/mL solution을 각 well 당 40 μL씩 최종 농도가 200 μg/mL가 되도록 처리한 후 30 min 동안 반응시킨 다음 media를 제거하였다. 각 well 당 dimethyl sulfoxide (DMSO; SAMCHUN, Korea) 150 μL을 첨가한 후 96 well plates에 100 μL씩 옮긴 후 ELISA microplate reader (680; Bio-Red laboratories, Japan)로 595 nm에서 흡광도를 측정하였다. 모두 3번 이상 측정하였으며, 이에 따른 평균값과 표준오차는 Microsoft excel program을 이용하여 분석하였다.
2) Wound healing assay
HaCaT 세포를 6 well plate에 2×106 cells/well로 분주한 다음 세포가 confluent한 상태가 될 때까지 5% CO2, 37℃ incubator에서 배양하여 안정화를 유도하였다. 그런 다음 200 μL의 tip (Neptune Scientific, USA)의 종단을 이용하여 세포의 창상을 1회 유도 하였으며 N-peptide1 및 N-peptide2를 농도별(100 μg/mL, 500 μg/mL, 1 mg/mL)로 처리 후, 시간대별(0, 12, 24 h)로 세포의 이동 정도를 도립 현미경(Axiovert 100; Zeiss, Germany)을 이용하여 관찰하였다.
3) Total RNA 추출 및 cDNA 합성
HaCaT 세포를 각각 6 well plate에 2×106 cells/well로 분주한 다음 5% CO2, 37℃ incubator에서 24 h 동안 안정화 시켰다. 그 후, 시료 N-peptide1과 N-peptide2의 최종 농도가 500 μg/mL가 되도록 처리하여 24 h 동안 배양하였다. 그 다음 RiboEX total RNA Isolation Solution (GeneAll Biotechnology, Korea) 500 μL를 각 well에 처리하고 상온에서 5 min 방치한 후 Scraper를 이용해 세포를 용해한 후 클로로폼, 이소프로판올, 70% 에탄올을 각각 첨가하는 과정을 통하여 total RNA를 추출하였다. 그 후의 cDNA 합성 과정은 DiaStar™ RT kit (SolGent, Korea)을 이용하여 진행하였다. Total RNA 1 μL와 oligo (dT) 20 primer 9 μL를 혼합한 뒤 65℃에서 5 min 동안 반응시킨 후에 8 mM dithiothreitol (DTT; SolGent) 1 μL, RNase (200 U/μL) 1 μL, 10 mM의 dNTP가 포함된 5X RT reaction buffer 4 μL, DEPC-DW를 첨가한 다음 40℃에서 1 h, 95℃에서 5 min 반응을 통하여 cDNA를 합성하였다.
4) 역전사 중합 효소 연쇄 반응(RT-PCR)
PCR은 SolgTM 2X Taq PCR Smart mix 1 (SolGent)를 이용하여 실시하였다. PCR 조건은 95℃에서 10 min 동안 예비 가열 후, 95℃에서 30 s denaturation, 각 specific primer sequences에 맞는 온도에서 30 s annealing, 72℃에서 30 s extension 과정을 35회 반복하였으며 72℃에서 10 min 동안 안정화 과정을 진행하였다. MMP-1, MMP-2, MMP-3, MMP-9, GAPDH의 specific primer sequences는 Table 1과 같다.
5) Western blot
6 well plate에 HaCaT 세포를 2×106 cells/well로 분주하여 24 h 동안 5% CO2, 37℃ incubator에서 배양한 다음 N-peptide1과 N-peptide2를 각각 최종농도가 500 μg/mL가 되도록 처리하여 24 h 동안 배양하였다. 그 다음 RIPA lysis buffer [25 mM Tris-Cl (pH 7.4), 1% NP40, 0.5% sodium deoxycholate, 150 mM NaCl, 1 mM PMSF]를 각 well에 150 μL씩 첨가하여 단백질을 분리한 뒤 14,000 rpm, 4℃에서 20 min 동안 원심분리하여 상등액을 취하였다. 분리한 단백질은 ELISA-reader를 이용하여 595 nm에서 흡광도 측정 한 후, 정량한 다음 8%, 12% acrylamide gel을 이용하여 전기영동을 실시하였다. 그 다음 nitro cellulose membrane에 transfer하고 2% bovine serum albumin (BSA; Bovogen, Australia)를 이용하여 blocking 한 후, 1차 항체를 4℃에서 18 h 반응시키고 2차 항체를 결합시킨 다음 실험 결과를 측정하였다.
6) CAM assay
수정란을 구입하여 70% 에탄올로 소독한 후에 37℃, 90% 습도가 유지되는 배양기에 넣어 3 일 동안 배양 후 수정란의 air sac 쪽에 직경 약 2 cm 크기의 원형 창을 만들고 air sac 아래의 막은 핀셋으로 제거한 다음 Tegaderm (3M Healthcare, USA)을 이용해 원형 창을 막은 후, 동일한 조건에서 2일간 더 배양하였다. 5일 째 되는 날, N-peptide1과 N-peptide2 500 μg/mL을 떨어뜨린 disk를 혈관 위에 올려놓은 후 3일 더 배양한 후에 혈관 신생 정도를 현미경(Nikon SMZ 445; Nikon Instruments Inc., Japan)으로 관찰하였다.
7) Organotypic coculture을 통한 human skin model 제작
Organotypic 3D culture는 Hiro Nakagawa (Li et al ., 2011)의 방법을 따랐다. SPL Insert™ Haging 6 well plate (SPL Life Sciences, Korea)에 Purecol® Bovine Collagen type Ⅰ (Advanced BioMatrix, USA)을 0.8 μm pore size를 갖는 inset 내부에 1 mL씩 분주하여 acellular layer를 만든다. 겔이 굳은 뒤 배양한 human fibroblast (2×107 cells/well)를 Matrigel® Basement Membrane Matrix (Corning®, USA)와 함께 섞은 후, acellular layer 층 위에 3 mL을 분주하여 cellular layer 층을 형성한 다음 37℃, 5% CO2 조건의 incubator에서 5일간 배양하였다. Human fibroblast를 배양한 cellular layer 위에 DMEM media와 Ham's F12 media (HycloneTM)를 3:1로 섞은 배지를 넣어 gel matrix를 안정화시킨 다음, HaCaT 세포(2×107 cells/mL)를 basement cell layer에 50 μL씩 분주하고, 37℃, 5% CO2에서 2 h 동안 안정화 과정을 거쳐 2주간 배양하였다. 그 다음 HaCaT 세포의 각질 분화 유도 후, N-peptide1과 N-peptide2는 500 μg/mL, vitamin C는 10 μg/mL이 되도록 7일 동안 배양하였다.
Results and Discussion
1. 나이아신 펩타이드 융합체의 세포 독성 검사
피부 표피층의 90% 이상을 구성하는 피부 각질형성세포(HaCaT)는 피부 미백, 피부 재생 등과 관련된 많은 실험에서 널리 사용되고 있는 세포주이다(Choung et al ., 2013). 본 연구에서는 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2가 화장품 원료로써 피부를 구성하는 피부 세포에 대한 독성 여부를 확인하기 위해 MTT assay를 실시하였다. MTT 분석은 세포 생존율을 측정하는 대표적인 실험방법 중 하나로 살아있는 세포수에 비례해서 흡광도를 나타낸다(Jeon et al ., 2011). HaCaT 세포에 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2를 각각 24 h 동안 처리 후에 세포 생존율을 측정한 결과, Figure 1에 나타난 바와 같이 HaCaT 세포에서 N-peptide1과 N-peptide2 농도별(100 μg/mL, 500 μg/mL, 1 mg/mL) 처리에 의한 세포 생존율이 90% 이상으로 나타나 세포 독성이 나타나지 않음을 확인하였다.
2. 나이아신 펩타이드 융합체의 피부 재생 효과
HaCaT 세포는 화학적 및 물리적 자극에 의해 손상을 받게 되면 다양한 케모카인(chemokine)과 사이토카인(cytokine)을 분비함과 동시에 피부 손상 부위로 이동해 세포의 증식을 유도한다(Choung et al ., 2013). 이러한 HaCaT의 증식 및 이주 활성은 콜라겐과 같은 피부 구성 단백질의 합성을 촉진하여 피부 재생과 상처 치유 등의 항노화를 유도한다(Choung et al ., 2013). 따라서 피부 세포의 성장 및 이동을 시험하는 wound healing assay를 통해 나이아신 펩타이드 융합체의 세포 재생 유도 효과를 검증하고자 하였다. Figure 2A, 2B와 같이 HaCaT 세포에 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2를 100 μg/mL, 500 μg/mL, 1 mg/mL의 농도로 처리했을 때, 시간 의존적으로 아무것도 처리하지 않은 무처리군에 비해 세포 성장 및 세포 이동이 감소함을 확인하였다. N-peptide1의 경우, 농도별로 55%, 50%, 32%로 wound area가 감소하였으며, N-peptide2의 경우에는 55%, 49%, 34%로 감소하였다. 이러한 결과를 바탕으로 N-peptide1과 N-peptide2 두 시료 모두 1 mg/mL의 농도에서 세포가 이동한 면적이 양성 대조군 vitamin C와 동등하게 감소되었음을 확인하였다. 따라서 본 실험을 통하여 나이아신 펩타이드 융합체의 세포 재생 유도 효과를 확인할 수 있었다.
3. 나이아신 펩타이드 융합체의 주름 관련 유전자 발현 억제 효과
피부 세포의 결합 조직을 구성하는 성분 중 하나인 콜라겐은 피부 진피층에 존재하며 피부를 지지하는 역할을 한다. 이러한 콜라겐의 감소는 피부 노화를 이끄는 중요한 요인이 될 수 있다. 콜라겐은 일반적으로 전사인자 AP-1에 의해 유도되는 기질 금속 단백질 분해 효소(MMPs)에 의해서 분해된다(Yoo et al ., 2010). MMPs는 피부 세포를 비롯한 많은 세포들로부터 분비되어 세포외 기질과 기저막(basement membrane, BM)을 구성하는 대부분의 단백질 성분을 분해하며 주름과 피부 처짐의 원인이 되는 것으로 알려져 있으며, domain에 의해 28개(MMP-1-MMP-28)로 나누어진다(Lee & Lee, 2013; Yoo et al ., 2010). MMP family 중 MMP-1은 콜라겐 타입 I을 분해시키는 대표적인 분해 효소로 알려져 있고, MMP-2는 제4와 제5형 교원질 및 탄력소를 분해하고 MMP-3의 경우, 라미닌(laminin), 파이브로넥틴(fibronectin), 프로테오글리칸(proteoglycan) 등 기질 단백질을 분해한다고 알려져 있다(Kim et al ., 2011; Lee & Lee, 2013). 또한 gelatinase로 알려진 MMP-9 역시 콜라겐을 분해한다(Hardie et al ., 2012). 따라서 본 연구에서는 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2 각각 500 mg/mL의 농도로 HaCaT 세포에 처리했을 때의 피부 노화 관련 유전자의 발현 정도를 알아보고자 하였다. 그 결과, N-peptide1과 N-peptide2를 처리했을 때 MMP-1, -2, -3, -9의 발현이 아무것도 처리하지 않은 negative control 군에 비해 감소되는 것을 확인하였으며, 특히 MMP-3 의 경우 양성 대조군 vitamin C와 유사하게 감소되는 것을 확인하였다(Figure 3). 이를 통해, 나이아신 펩타이드 융합체가 주름 및 노화 방지에 효과가 있음을 알 수 있다.
4. 나이아신 펩타이드 융합체가 피부 세포의 에너지 대사 관련 단백질 발현에 미치는 영향
나이아신 펩타이드 융합체 처리 시, 에너지 대사 관련 단백질에 영향을 미치는 정도를 알아보고자 western blotting을 실시하였다. AMP-activated protein kinase (AMPK)는 생체 내의 에너지 인식 및 항상성 조절, 당과 지방의 대사에 있어서 다른 여러 대사 관련 효소들을 직접 인산화시켜 세포 내 에너지 균형 및 영양분 대사 조절에 중요한 역할을 하며, mammalian target of rapamycin (mTOR)는 세포 내 ATP 수준을 직접적으로 감지하여 에너지 수준과 성장 요소를 제어한다(Son et al ., 2005). 또한 serine/threonine kinase인 Akt는 세포 밖 성장 인자에 의한 신호를 세포 안으로 전달하며, 세포의 증식과 생존, 사멸, 당 대사를 조절한다(Yoon et al ., 2007). 따라서 본 연구에서는 나이아신 펩타이드 융합체가 피부 세포의 에너지 대사 관련 단백질 발현에 미치는 영향을 알아보기 위하여 western blotting을 실시하였다. 그 결과, Figure 4A, 4B와 같이 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2를 HaCaT 세포에 500 μg/mL의 농도로 처리했을 때, 에너지 대사 관련 단백질 p-mTOR, p-AMPK, p-Akt의 발현이 증가하는 것을 확인하였으며, N-peptide1, 2 모두 양성 대조군 vitamin C에 비해 에너지 대사 관련 단백질의 발현이 증가되는 것을 확인하였다. 이를 통해 나이아신 펩타이드 융합체 처리 시, 활발한 에너지 대사가 이루어지며 이는 피부 재생과 항노화에 효과가 있는 것으로 여겨진다.
5. 나이아신 펩타이드 융합체의 혈관 신생 작용을 통한 피부 재생효과
혈관 신생은 상처 치유뿐만 아니라 암화 과정, 초기 발생 과정 등 정상적인 상태에서도 중요한 역할을 담당하며, 피부에 있어 영양 공급을 담당한다고 알려져 있다(Song & Kim, 2009). 또한 내인성 노화의 경우, 혈관의 감소가 영양 공급 감소를 유발하여 피부 노화의 원인이 된다는 연구 결과가 있다(Yoon et al ., 2007). 따라서 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2 500 μg/mL 처리에 의한 혈관 신생 촉진 효과를 확인하기 위해 ex vivo CAM assay를 실시한 결과, 혈관 신생 작용이 활발한 것을 확인하였으며 양성 대조군으로 사용한 vitamin C와 비례하여 혈관 신생을 촉진하는 것을 확인하였다(Figure 5). 이를 통해 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1과 N-peptide2로 인한 피부 재생 효과 및 항노화 효과가 있는 것으로 여겨진다.
6. 3D cell culture
최근 각질형성세포의 3차원적인 배양을 통하여 여러가지 연구가 진행되고 있는데, 이러한 3차원 배양은 기존에 수행하던 단층 배양의 단점을 극복해 피부의 특징인 각질화를 형성하여 표피의 분화 연구, 피부 독성 검사 등 많은 피부 연구에 이용되고 있다(Kim et al ., 2000; Ravi et al ., 2015; Yoon et al ., 2007). 인체 표피 중 90% 이상을 차지하는 각질형성세포는 대략 28일을 주기로 진피층에서 표피층으로 밀려나가 각질층으로부터 탈락되며, 이러한 세포의 교체를 턴오버(tern-over)라고 한다(Kim, 2007; Ko et al ., 2009). 피부의 턴오버 주기는 노화가 진행될수록 각질형성세포의 기능이 저하되어 더 길어지는데, 이로 인해 두꺼워진 각질층에 의해 피부가 거칠어지고 주름이 늘어나게 된다(Min & Bae, 2013). 따라서 N-peptide1 및 N-peptide2 500 μg/mL 처리에 의한 피부 턴오버 주기 개선 효과를 확인하기 위해 3D cell culture를 실시한 결과, 피부의 각질층이 양성 대조군인 vitamic C의 경우 362.00 px, 나이아신 펩타이드 융합체 N-peptide1의 경우 320.00 px, N-peptide2의 경우 198.00 px로 두 시료 모두 양성 대조군 vitamin C와 유사하거나 더 감소함을 확인하였다(Figure 6). 이를 통하여 나이아신 펩타이드 융합체가 피부 턴오버 주기 개선 효과를 가지고 있음을 알 수 있다.
Conclusion
MTT assay를 통하여 나이아신 펩타이드 융합체의 세포 독성 검사를 실시한 결과, N-peptide1과 N-peptide2 처리에 따른 세포 독성은 나타나지 않았다. 나이아신 펩타이드 융합체의 피부 재생 효능을 확인하기 위하여 wound healing assay와 CAM assay를 실시한 결과, N-peptide1과 N-peptide2이 양성 대조군 vitamin C와 유사하게 HaCaT 세포의 이동을 유도하는 것이 관찰되었으며, CAM model에서 역시 혈관 신생 작용이 활발하게 이루어짐을 확인하였다.
노화의 대표적인 원인인 콜라겐 감소에 관여하는 MMPs 발현 측정에서는 N-peptide1과 N-peptide2 처리에 의해 MMP-1, -2 , -3, -9의 발현이 감소하였으며, 이를 통해 N-peptide1 및 N-peptide2가 주름 유발 관련 유전자의 발현을 억제시키는 것을 확인하였다.
또한 피부 세포의 에너지 대사에 나이아신 펩타이드 융합체가 미치는 영향을 확인하기 위하여 western blot을 실시하였을 때, 에너지 대사에 관여하는 단백질들의 발현이 양성 대조군 vitamin C와 유사하거나 보다 증가함을 확인하였다.
마지막으로 나이아신 펩타이드 융합체의 피부 주름 개선 효능 외에 전반적인 피부 턴오버 개선 효과를 확인하기 위해 3D cell culture 후, hematoxylin & eosin (H & E) 염색 방법을 이용해 세포층 단면을 현미경으로 관찰한 결과, N-peptide1과 N-peptide2 처리군에서 피부 재생 유도 효과 및 턴오버 개선 효과가 양성 대조군 vitamin C와 유사하거나 더 높게 확인되었다.
결론적으로 피부 세포에 유해하지 않은 나이아신 펩타이드 융합체는 단순 주름 개선 효능만이 아닌 피부의 턴오버 주기 개선을 통한 피부의 과각질화 예방 효능 또한 있는 것으로 보아 주름 개선 및 피부 개선을 위한 기능성 화장품소재로서 이용될 수 있을 것으로 사료된다.
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