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Asian J Beauty Cosmetol > Volume 17(1); 2019 > Article
Lactobacillus rhamnosus BHN-LAB105를 이용한 발효 엉겅퀴의 항산화 및 미백효과에 대한 유용성 평가

요약

목적

본 연구는 Lactobacillus rhamnosus (L. rhamnosus) BHN-LAB105를 이용하여 엉겅퀴의 뿌리, 꽃과 전초를 발효한 발효추출물의 화장품 소재로서의 효능을 높이고, 화장품 원료로서의 효과를 평가하고자 한다.

방법

연구에 사용한 엉겅퀴의 뿌리, 꽃, 전초 발효추출물은 메탄올을 이용하여 추출하였다. 총 폴리페놀과 총 플라보노이드 함량은 gallic acid와 rutin에 의해 각각 정량하였다. 추출물의 항산화능은 2, 2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging assay를 통해 확인하였다. 또한, 추출물의 미백효과는 tyrosinase inhibition activity assay를 통해 분석하였다.

결과

발효를 통한 엉겅퀴 뿌리 및 전초 추출물의 총 폴리페놀 함량은 발효하지 않는 엉겅퀴 추출물에 비해 각각 67% 와 32% 증가하였다. 또한, 총 플라보노이드는 모든 발효 추출물에서 증가하는 것을 확인했다. 엉겅퀴 발효 추출물의 DPPH 라디칼 소거능은 발효 후 엉겅퀴 뿌리, 꽃, 전초 추출물에서 각각 67%, 13%, 32% 증가하였다. Tyrosinase 저해 활성은 발효 각 부위에서 각각 92%, 78% 및 65% 증가되는 것으로 분석되었다.

결론

항산화능과 미백효과는 발효 엉겅퀴 전초 추출물에서 가장 높게 나오는 것으로 분석되었다. 이로써 L. rhamnosus BHN-LAB105로 발효된 엉겅퀴 전초 추출물은 기능성 화장품 소재의 후보물질로서 발전 가능할 것으로 판단된다.

Abstract

Purpose

This study aimed to increase the effectiveness of the cosmetic functions of fermented thistle (Cirsium japonicum) roots, flowers, and whole plant’s extracts with Lactobacillus rhamnosus (L. rhamnosus) BHN-LAB105 and to evaluate the efficacy of the fermented extracts as cosmetic materials.

Methods

Samples included methanol extracts of roots, flowers, and whole thistle plant. Total polyphenol and flavonoid contents of each extract were quantified from gallic acid and rutin. The antioxidative effect of the extract was confirmed using a 2, 2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging assay. Moreover, the whitening effect of each extract was measured using tyrosinase inhibition activity assay in cell-free level.

Results

The total polyphenol contents of fermented root and whole thistle extracts were higher (67%) compared to nonfermented root and whole thistle extracts (32%). The total flavonoid contents were also higher in all fermented extracts of thistle. The DPPH radical scavenging activity of fermented roots, flowers, and whole thistle extracts was higher by 67%, 13%, and 32% compared to nonfermented extracts, respectively. The tyrosinase inhibition activity was higher by 92%, 78%, and 65% for fermented roots, flower, and whole thistle extracts, respectively.

Conclusion

The highest antioxidative and whitening effects were investigated in the fermented whole thistle extracts. As a result, fermented whole thistle extracts with L. rhamnosus BHN-LAB105 could be developed as a potential functional cosmetic material.

中文摘要

目的

本研究旨在提高利用鼠李糖乳杆菌BHN-LAB105发酵的蓟(Cirsium japonicum )根,花和整株植物提取物的整容功效,并评估发酵提取物作为化妆品原料的可行性。

方法

样品包括根,花和整个蓟植物的甲醇提取物。利用没食子酸和芦丁定量每种提取物的总多酚和类黄酮含量。使用2,2-二苯基-1-苦基肼基(DPPH)自由基 清除测定法确认提取物的抗氧化作用。此外,使用酪氨酸酶抑制法来活性测量每种提取物的增白效果。

结果

与未发酵的根和全蓟提取物(32%)相比,发酵根和全蓟提取物的总多酚含量更高(67%)。在蓟的所有发酵提取物中总黄酮含量也更高。与未发酵的提取物相比,发酵的根,花和整个蓟提取物的DPPH自由基清除活性分 别高出67%,13%和32%。发酵的根,花和整个蓟提取物的酪氨酸酶抑制活性分别高出92%,78%和65%。

结论

在发酵的全蓟提取物中,抗氧化和美白效果最高。这表明用鼠李糖乳杆菌BHN-LAB105发酵的全蓟提取物可 以开发为潜在的功能性化妆品原料。

Introduction

엉겅퀴(Cirsium japonicum)는 우리나라 전역에 약 13종이 자생하는 국화과의 2년초 식물로서, 데치거나 건조하여 나물 또는 차의 형태로 섭취되고 있다(Chung et al ., 2007). 한방에서는 대계라 불리며 뛰어난 지혈, 항균작용과 해독 작용으로 민간과 한약처방으로 이용되었다(Mok et al ., 2011).
엉겅퀴 뿌리와 꽃은 각각 대계근과 대계화로 불리며, 그 추출물은 혈뇨, 간염, 고혈압 등에 치료용으로 활용될 뿐만 아니라 항당뇨 및 항비만 효과가 있다고 보고되었다(Kang et al ., 2012). 엉겅퀴 속 식물은 apigenin, luteolin, myricetin 등을 포함하여 약 78종의 플라보노이드가 함유되어 있다고 보고되었고, 이들은 항염증, 항암, 항균 및 면역 증진 등의 활성을 나타낸다고 알려졌다(Lee et al ., 2003; Liu et al ., 2006). 플라보노이드는 식품으로 섭취될 때 심장병 예방에 큰 도움이 되며, 항균제, 항바이러스제, 항염제, 지질과산화 억제, 항돌연변이성의 효능을 나타낸다(Das, 1971; Das & Cheeseman, 1991; Kandaswami & Middleton, 1994; Middleton & Kandaswami, 1992; Nonaka et al ., 1990). 또한 엉겅퀴는 다른 약용 식물에 비해 약 4배 많은 Fe (철분)를 함유하고 있다(Lee et al ., 2001).
엉겅퀴는 예로부터 간장약, 담즙약 등으로 사용되어 왔으며 이는 엉겅퀴가 함유한 플라보노이드 성분인 실리마린(silymarin)때문이다(Lee et al ., 1997). 실리마린은 플라보리그난 계열 화합물을 총칭하는 말로서, 엉겅퀴 추출물에는 silybin, isosilybin, silychristin, silydianin 등 다양한 플라보리그난 화합물이 포함하고 있어, 이 복합체를 silymarin이라 한다(Lee et al ., 1997). 실리마린(Silymarin)은 예로부터 간장장애 보호효과가 있는 것으로 보고되었다(Hikino et al ., 1984; Muriel & Mourelle, 1990). 또한 항산화에 관여하고, 각질 세포의 분화와 노화를 억제하여 피부 노화 방지, 피부염증, 피부암 예방, 피부세포를 보호 및 멜라닌의 생성과 tyrosinase의 발현 억제능이 있는 것으로 보고되었다(Choo et al ., 2009a; Choo et al ., 2009b; Mallikarjuna et al ., 2004; Singh & Agarwal, 2002).
한편 유산균은 식품의 발효에 관여하는 주된 미생물로 발효식품의 대부분이 유산균 발효에 해당한다(Ryu et al ., 2015). 유산균은 정장작용(Ann et al ., 2013), 면역증강효과(Jeong et al ., 2007), 항암작용(Kato et al ., 1994) 등 다양한 생리활성을 가지고 있는 것으로 알려져 있으며 유산균 발효는 식품의 영양 또는 기능성 성분을 증대시켜 그 가치를 증가시킨다(Leroy & De Vuyst, 2004). 유산균 발효를 통하여 천연 추출물 함유 활성 성분 및 생리활성의 증가를 목적으로 다양한 연구가 활발하게 진행되고 있다.
이에 따라 본 연구에서는 부위별로 엉겅퀴를 발효하고, 발효 추출물의 항산화 및 미백활성 효과를 비교 분석하여 발효 엉겅퀴 추출물의 피부미백 원료로서 효능을 평가하였다.

Methods

1. 시료

본 연구에 사용된 부위별 엉겅퀴는 진도허브(Korea)에서 구입하였다. 연구에 사용된 엉겅퀴는 2017년 전라남도 진도에서 재배 및 수확되었으며 직사광선을 받지 않는 실온에 보관하였다. 실리마린은 Sigma-Aldrich (USA)사에서 구입하였으며 최대 용해도(77.36 mg/mL)를 100%로 설정하고 농도에 맞추어 희석하여 사용하였다.

2. 엉겅퀴 추출조건

엉컹퀴 추출물은 엉겅퀴 전초, 뿌리와 꽃으로 나누어 추출하였으며, 추출방법은 methanol에 3일간 침지하고 3 회에 걸쳐 추출을 진행하였다. 추출된 추출물은 filter paper로 여과한 후 Rotary evaporator (N-1100 and N-1000; EYELA Co., Japan)을 이용하여 감압 농축하고 동결 건조하여 실험에 사용하였다.

3. 총 폴리페놀 함량의 측정

총 폴리페놀 함량의 측정은 Folin-Denis (Smeriglio et al ., 2016) 방법에 따라 측정하였다. 엉겅퀴 발효 추출물은 1,000 ppm 농도로 희석하여 실험에 사용하였다. 본 실험은 각 시험 물질을 10 μL, 10% sdium carbonate (Na2CO3, Sigma-Aldrich) 200 μL, 50% Folin-ciocalteu reagent (Sigma-Aldrich) 10 μL를 혼합하여 상온에서 30 min 반응 후 760 nm에서 흡광도를 측정하였다. Gallic acid (Sigma-Aldrich)를 표준 물질로 사용하여 얻어진 표준 곡선을 이용하여 총 폴리페놀 함량(μg gallic acid equivalent/100 g)을 계산하였다.

4. 총 플라보노이드 함량 측정

총 플라보노이드 함량의 측정은 flavonoid에 알칼리를 작용시켜 측정하였다(Zhishen et al ., 1999). 시험은 각 시험 물질을 20 μL 와 70% ethanol 80 μL, 5% sodium nitrite (NaNO2, Sigma-Aldrich) 6 μL와 혼합하여 5 min 상온에서 반응한 후, 10% aluminum chloride hexahydrate (AlCl36H2O, Sigma-Aldrich) 12 μL를 첨가하여 상온에서 6 min 반응하였다. 1 N sodium hydroxide (NaOH, Sigma-Aldrich) 40 μL를 첨가하고 11 min 배양하여 반응을 종료하고 420 nm에서 흡광도를 측정하였다. Rutin (Sigma-Aldrich)을 표준 물질로 사용하여 표준 곡선을 작성하여 총 플라보노이드 함량(μg rutin equivalent/100 g)을 계산하였다.

5. DPPH radical 소거활성능 측정

추출물의 DPPH radical 소거 활성능 측정은 Blois (1958) 방법에 준하여 DPPH에 대한 수소 공여 효과로 측정하였다. DPPH는 빛을 차단한 상태에서 99% ethanol을 이용하여 2 mM 농도가 되도록 희석하여 사용하였다. 각 시험 물질 20 μL에 DPPH solution 180 μL를 넣고 37℃에서 30 min 반응시켜 517 nm에서 흡광도를 측정하였다. 전자공여능은 시험 물질을 첨가한 시험군과 첨가하지 않은 군의 흡광도 차이를 백분율로 나타내었다.
Antioxidant activity (%)=[(Absorbance of sample-Absorbance of sample blank)/(Absorbance of control-Absorbance of blank)]×100

6. Tyrosinase 저해 활성능 측정

Tyrosinase 저해 활성능은 L-tyrosine이 기질로 작용하여 tyrosinase에 의해 L-tyrosine이 L-DOPA로, L-DOPA가 다시 L-DOPA quinone으로 전환되는 원리(Jeon et al ., 2009)를 이용하였으며, Nerya et al . (2003)Masamoto et al . (2003)의 방법을 변형하여 cell-free tyrosinase 활성을 평가하였다. 각 시험 물질 10 μL에 2 mM L-tyrosine (Sigma-Aldrich, USA) 50 μL와 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 6.8) 90 μL을 첨가하여 37℃에서 5 min 전배양 후, mushroom tyrosinase (110 unit/mL, Sigma-Aldrich, USA)를 50 μL 더하여 37℃에서 15 min간 반응시켰다. 반응 후 UV-spectrometer (Spark 10M; TECAN, Switzerland)를 이용하여 405 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 양성 대조군은 arbutin을 사용하였다. 결과 값은 tyrosinase를 첨가한 시험군과 첨가하지 않은 시험군의 흡광도 차이를 백분율로 나타내었다.
Tyrosinase inhibition activity (%)=100-[(Absorbance of sample-Absorbance of sample blank)/(Absorbance of control-Absorbance of blank)]×100

7. 발효 유산균 분리와 선별

엉겅퀴의 발효를 위해 사용된 유산균은 국내 김치로부터 분리 및 동정한 L. rhamnosus BHN-LAB105를 사용하였다(Figure 1). 이 균주는 본 연구소에서 보유중인 200여종 균주 중 paper disc법을 통해 활성을 확인 후 선별하였다.

8. 미생물 배양과 발효

유산균은 MRS (Difco Laboratories Inc., USA)에서 배양하여 실험에 사용하였으며, 엉겅퀴 20 g, 유산균 배양액을 80 mL 접종하여 37 ℃에서 3일간 (72 h) 발효하였다.

9. 발효 미생물 성장 확인을 위한 qPCR

L. rhamnosus BHN-LAB105를 접종하고 시간에 따라 시료를 채취한 후, 시간에 따른 미생물의 성장을 정량적으로 평가하기 위해 quantitative polymerase chain reaction (qPCR)을 수행하였다.
각 시료별 미생물의 군집의 크기를 정량적으로 평가하기 위해 qPCR을 수행하였다. 미생물 군집을 정량하기 위해서 Lacto-F (5'-GCA GCA GTA GGG AAT CTT CCA-3')와 Lacto-R (5'-GCA TTY CAC CGC TAC ACA TG-3') primer를, Escherichia coli (E. coil ) DH5α의 total DNA를 주형으로 PCR을 수행하여 350 bp의 PCR 산물을 얻었다(Castillo et al ., 2006). 각각의 PCR 산물은 All-in-oneTM vector (Biofact, Korea)에 cloning하였으며, plasmid DNA는 HiGeneTM Plasmid Mini Prep Kit (Biofact, Korea)를 이용하여 추출하였다. 염기서열분석은 M13-20F primer (All-in-oneTM Vector Systems manual)를 이용하여 분석하였고, BLAST search를 통해 확인하였다. 염기서열이 확인된 plasmid DNA는 real-time PCR (CFX96 TouchTM Real-Time PCR Detection System, Bio-Rad)를 이용하여 melting curve 분석 후 정량분석을 위한 표준 유전자(artificial standard clone)로 사용하였다.
정량 PCR을 위해 Real time PCR과 iTaqTM SYBR® Green Supermix with ROX (Bio-Rad)를 이용하였다. Lactobacillus sp . 16S rRNA gene 정량 PCR은 Lacto-F/R를 이용하였고(Castillo et al ., 2006), 반응조건은 95℃에서 15 min 동안 pre-denaturation 시켜, 95℃에서 30 s denaturation, 67℃에서 30 s annealing, 72℃에서 30 s extension후 fluorescence를 측정하고 45 cycles을 수행하였다. 그리고 final extension은 72℃에서 5 min 동안 수행하였다. Melting curve 분석은 65℃부터 95℃까지 0.2℃씩 증가시키면서 fluorescence를 측정하였다(Kim et al ., 2017).
정량을 위해서 표준 유전자를 serial dilutions하여 real time-PCR을 수행하였으며, DNA 농도는 NanoDrop ND-2000 (Thermo Scientific, USA)을 이용하여 1 ng/μL을 분석에 이용하였다(Gantner et al ., 2011; Park et al ., 2008; Radjabian et al ., 2008).

10. Silymarin의 분석

발효 엉겅퀴 추출물의 실리마린 함량 측정은 Radjabian et al. (2008)의 방법을 이용하여 HPLC (Agilent Technology 1260 Infinity Ⅱ, USA)로 분석하였다. 컬럼은 Agilent Eclips plus C18 (150×4.6 mm, 5 μm)를 사용하였으며, 이동상으로는 methanol-water (50:50, v/v)를 사용하여 등용매 상태로 분석하였다. 이동상의 유속은 1 mL/min로 분석하였으며, DAD검출기를 통해 288 nm파장에서 검출하였다.

11. 통계 처리

본 연구의 모든 실험 결과는 3회 반복 측정하여 means±standard deviation로 나타내었으며, 통계 분석은 SPSS (SPSS INc., Armonk)를 이용하여 각 시험군 간의 유의성을 검증하였다. 유의성은 p <0.01, p <0.05 수준에서 Duncan's multiple range test에 따라 분석하였다.

Results and Discussion

1. 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량 측정

총 폴리페놀과 총 플라보노이드는 과일 및 엽채류에 풍부하게 함유되어 있으며, 식물이 자외선으로부터 스스로를 보호하기 위해 만들어내는 물질로 항산화, 항균, 세포 재생 등의 역할을 하는 것으로 알려져 있다(Park et al ., 2008). 플라보노이드는 폴리페놀계 화합물 중 하나이며, 페놀성 화합물은 분자 내 하이드록실기가 주변의 효소 또는 단백질과 결합하며 활성산소종을 제거해 준다.
엉겅퀴의 발효 전후 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량의 변화를 분석하였다(Table 1). 발효 전 엉겅퀴 뿌리, 꽃 및 전초의 총 폴리페놀 함량은 각각 60.93, 212.40, 142.66 μg/100 g으로 확인되었고, 발효 후에는 101.86, 128.86, 188.40 μg/100 g으로 발효 전 총 폴리페놀의 함량보다 증가되는 것을 확인하였으며, 뿌리와 꽃에서는 p <0.01, 전초에서는 p <0.05 수준 내 유의성을 갖는 것으로 확인되었다. 총 플라보노이드 함량은 발효 전 엉겅퀴 뿌리, 꽃 및 전초에서 69.77, 146.16, 199.61 μg/100 g으로 각각 분석되었고, 발효 후에는 102, 160.05, 210.16 μg/100 g으로 발효 전 총 플라보노이드 함량보다 증가되는 것을 확인하였으며, 뿌리와 전초에서는 0.05 수준 내 유의성이 확인되었다. 미생물 발효를 통해 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량이 발효 전 시료보다 증가되는 경향을 확인하였다. 총 폴리페놀 함량은 발효 후 엉겅퀴 뿌리에서 약 67% 증가되었고, 반면에 엉겅퀴 꽃은 발효 후 약 40% 감소하였다. 엉겅퀴 전초는 발효 후 약 32% 증가하면서 상대적으로 작은 증가량을 확인하였다. 이는 부위별 특성에 따라 유산균 성장에 영향을 미치며, 미생물 성장은 부위별 엉겅퀴의 발효에 영향을 줄 수 있다는 것을 추론할 수 있다(Table 1). 반면에 총 플라보노이드 함량은 발효 후 엉겅퀴 뿌리, 꽃과 전초에서 각각 46%, 9%, 5% 증가된 값을 보였다. 플라보노이드는 폴리페놀류의 일종이지만 결과적으로 플라보노이드 함량의 증감과 폴리페놀의 증감의 경향이 다른 것은, 플라보노이드 외에 다른 폴리페놀 성분의 변화가 총 폴리페놀 함량의 증감에 영향을 준 것으로 사료된다(Gwak & Kim, 2018; Jung & Ryu, 2018; Lee et al ., 2012).

2. DPPH radical 소거활성능 측정

엉겅퀴 발효 추출물의 DPPH radical 소거활성능을 측정하였으며, 양성대조군으로는 L-ascorbic acid를 사용하였으며, 모든 시험 물질은 1,000 ppm 농도로 측정하였다(Figure 2). 엉겅퀴 뿌리는 발효 전 36.55%, 발효 후 55.4% (p <0.05)의 활성을 보였으며, 엉겅퀴 꽃은 발효 전 82.7%, 발효 후 93.08% (p <0.01)의 활성을 나타내는 것으로 확인되었다. 또한 엉겅퀴 전초는 발효 전 65.77%, 발효 후 68.90% (p <0.05)의 활성을 나타내는 것으로 확인되어 발효 후 전체적으로 DPPH 라디칼 소거활성능이 증가되는 것을 확인하였다. 엉겅퀴 뿌리 발효 추출물이 55.4%의 활성을 보이며 비발효 추출물(36.5%)에 비해 약 52% 유의적 증가 값을 보였으며, 엉겅퀴 꽃은 발효 추출물(93.08%)이 비발효 추출물(82.7%)에 비해 약 13% 증가되었다. 또한 엉겅퀴 전초는 비발효시 65.77%에서 발효 후 68.90%로 발효하지 않은 전초 DPPH radical과 비교하여 약 4% 수준에서 유의적으로 증가하였다(Figure 2). L-ascorbic acid는 같은 농도에서 94.47%의 활성을 보였다(Lee & Ryu, 2018). L. rhamnosus BHN-LAB 105은 부위별 엉겅퀴의 발효를 통해 DPPH radical 소거활성능을 전체적으로 증가시키는 경향을 확인하였다.

3. Tyrosinase 저해활성도 측정

모든 시험물질은 1,000 ppm 농도에서 tyrosinase 저해 활성도를 측정하였으며, 양성대조군으로 5,000 ppm 알부틴(Arbutin, Sigma-Aldrich)을 사용하였다(Figure 3). 엉겅퀴 뿌리의 tyrosinase 저해활성도는 발효 전 13.38%, 발효 후 25.70% (p <0.01)로 확인되었으며, 엉겅퀴 꽃은 발효 전 11.89%, 발효 후 21.25% (p <0.05), 엉겅퀴 전초는 발효 전 16.03%, 발효 후 26.52% (p <0.01)의 값으로 전체적으로 발효 후 tyrosinase 저해활성도가 증가되는 것을 확인하였다. 엉겅퀴 발효 추출물의 tyrosinase 저해 활성도는 발효하지 않은 엉겅퀴 추출물에 비해 전반적으로 증가되는 경향을 보였다. 엉겅퀴 뿌리는 약 92% 증가율을 보였으며, 엉겅퀴 꽃은 약 78% 증가, 엉겅퀴 전초는 약 65%의 유의적 증가를 확인하였다. 시험물질의 농도가 1,000 ppm인 것을 감안하면 알부틴 양성대조군(32.47%)에 비해 높은 tyrosinase 저해활성도를 나타내는 것으로 판단할 수 있다.

4. 실리마린 standard를 이용한 항산화 및 미백활성도 분석

엉겅퀴의 유효성분으로 알려진 실리마린의 항산화능과 미백 활성도를 조사하기 위해 총 폴리페놀 함량 및 플라보노이드 함량, DPPH radical 소거활성능과 tyrosinase 저해활성도를 측정하였다(Figure 4, Table 2). 실리마린은 증류수, 실온 상태에서 77.36 mg/L의 용해도를 갖는다. 본 실험에는 77.36 mg/L를 100%로 설정하고 각각 50% (38.68 mg/L), 25% (19.34 mg/L), 10% (7.736 mg/L)로 희석하여 사용하였다. 실리마린의 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량은 10% 용해도 조건에서 각각 36.958, 14.333 μg/100 g이었으며, 20% 용해도일 때 72,458, 46.555 μg/100 g, 50% 용해도일 때 131.041, 68.555 μg/100 g, 100% 용해도일 때 246.25, 116.0 μg/100 g으로 확인되어 농도 증가에 따라 농도의존적으로 증가하였다(Table 2). DPPH radical 소거활성능(Figure 4A)은 실리마린 100% 용해도 조건일 때 약 31.55%의 활성을 보였으며, 농도 감소에 따라 각각 16.39%, 8.01%, 0.83%의 활성을 보였다. 한편 양성대조군으로 사용된 L-ascorbic acid 1,000 ppm은 87%의 활성도를 보였다. L-ascorbic acid 1,000 ppm과 실리마린을 같은 농도로 가정하여 비교한다면, 실리마린이 약 4.81배 높은 활성을 나타내는 것으로 추론할 수 있다. 농도별 실리마린의 tyrosinase 저해활성도 측정결과는 Figure 4B와 같다. 실리마린은 10% 용해도 조건에서 15.23%의 활성을 보였으며 농도 증가에 따라 각각 28.32%, 38.44%, 53.13%의 활성을 나타내었다. 양성대조군으로 사용된 arbutin 5,000 ppm은 32.46%의 tyrosinase 저해활성도를 보였다. 기존 발표된 연구결과에 따르면 실리마린은 유사 농도의 마카 추출물보다 높은 항산화도를 갖으며(Park et al ., 2017), 상백피 추출물보다 높은 tyrosinase 발현 억제능을 갖는 것으로 확인되어 피부미백 소재로서 가능성이 있을 것으로 사료된다(Jee, 2009).

5. Real time PCR을 이용한 BHN-L AB105의 정량

발효 시간에 따른 유전자 copy수를 정량하기 위해 real time-PCR을 수행하였다(Figure 5). 발효 도입 시 엉겅퀴 뿌리, 꽃과 전초의 발효미생물 copy수는 각각 1.83×106±1.27×105molecule•copy/μL, 9.03×105±5.89×104 molecule•copy/μL, 1.13×106±2.42×105molecule•copy/μL 이었으며, 8 h 후 4.06×106±1.41×105molecule•copy/μL, 2.07×106±4.10×105molecule•copy/μL, 3.50×106±4.20×105molecule•copy/μL로 증가하였다. 또한 엉겅퀴 뿌리, 꽃과 전초에서 발효 10 h 이후로는 크게 증가하거나 감소되는 경향 없이 전체적으로 유지되는 것을 확인하였다. 발효 시작 72 h 후 엉겅퀴 뿌리의 copy수는 3.87×106±2.14×105molecule•copy/μL 이었고, 엉겅퀴 꽃은 1.83×106±2.48×105molecule•copy/μL, 엉겅퀴 전초는 3.07×106±3.46×105molecule•copy/μL로서 유산균의 사멸 없이 유지되는 것을 확인하였고 이로써 발효를 종결하였다.

6. 엉겅퀴의 발효 추출물 물질분석 (HPLC)

HPLC를 이용하여 엉겅퀴와 발효에 따른 엉겅퀴 추출물의 성분 변화를 분석하였다(Figure 6). 발효 전과 발효 후의 엉겅퀴 전초를 분석하였으며, 발효 전 엉겅퀴 전초 추출물의 주요 성분 피크는 8.02, 19.31, 21.37, 31.21 min에 검출되었으며 retention time 10 min 이내에 다양한 피크가 검출되는 것을 확인하였다(Figure 6A). 발효 후 엉겅퀴 전초의 주요 피크는 2.11, 2.22, 8.00 min에서 검출되었다(Figure 6B). 발효 전 엉겅퀴 전초와 다르게 retention time 5 min 이내에 다양한 피크가 관찰되며, 이는 높은 분자량의 성분들이 유산균 발효를 통해 전환되어 저분자화 된 것으로 추론된다. 또한, 약 19, 21, 31 min에 검출되는 피크는 발효 전과 발효 후가 매우 비슷한 값을 갖는 것으로 보아, 해당 성분은 발효에 의해 전환 또는 저분자화 되지 않은 것으로 판단된다. 향후, 미생물에 의한 엉겅퀴 발효과정에서 생물 전환되는 물질과 미생물의 대사과정에 관한 연구가 필요할 것으로 사료된다.
또한, 본 연구팀이 분리한 발효미생물인 L. rhamnosus BHN-LAB105는 엉겅퀴 발효과정을 통해 발효 추출물의 항산화능과 미백효과를 증진시키는 것으로 확인되었으며, 기능성 화장품에서 요구하는 항산화 및 미백 효과를 증진시킬 수 있는 유용미생물로 활용이 가능한 것을 확인하였다. 또한, 미생물 발효는 천연물이 가지는 화장품 소재에서 요구하는 항산화와 미백과 같은 기능성 효과를 증가시킬 수 있는 매우 유용한 기술이라 할 수 있다(Park et al ., 2018; Yoon et al ., 2018).

Conclusion

실리마린과 엉겅퀴 부위별 발효 추출물의 항산화능을 비교한 결과, 엉겅퀴 꽃, 전초, 뿌리 순서로 실리마린보다 높은 DPPH 라디칼 소거활성능을 확인하였으며, 발효를 하면 그 값이 더 높게 나타났다. 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량은 실리마린 100% 조건에서 각각 246.26, 116 μg/100 g으로 확인되었으나 발효하지 않은 엉겅퀴 전초에서는 142.66 g/100 g과 199.61 g/100 g로 매우 높은 값을 나타내었고, 미생물 발효 후 엉겅퀴 전초 추출물의 총 폴리페놀 함량은 188.4 μg/100 g, 총 플라보노이드 함량은 210.16 μg/100 g으로 모두 증가하는 것을 확인하였다. 미생물을 이용해 발효한 엉겅퀴는 엉겅퀴의 지표물질로 알려진 실리마린보다 높은 총 폴리페놀과 총 플라보노이드 함량을 가지는 것을 확인하였다. 또한, L. rhamnosus BHNLAB105를 활용한 발효를 통해 부위별 발효 엉겅퀴 추출물의 미백 활성능이 증가되는 확인하였으며, 발효 엉겅퀴 추출물의 미백 활성도는 1,000 ppm 농도의 발효 엉겅퀴 전초가 26.53%, 발효 엉겅퀴 뿌리 25.7%, 발효 엉겅퀴 꽃 21.26%의 값을 보인 반면 실리마린은 100% 용해도 조건(77.36 ppm)에서 53.13%로 비교적 높은 값을 나타내었다. 하지만 순수한 실리마린 물질을 화장품 소재로 활용하는 것은 산업적 측면에서 매우 어려우며, 순수한 실리마린 물질을 이용하여 미백 활성도 53.13% 이상의 효과를 기대하는 것 역시 매우 어렵다고 판단된다. 따라서 순수한 실리마린 물질을 다기능성 화장품 소재로서 산업에 적용하기에는 한계가 있을 것으로 판단되며, 엉겅퀴 발효 추출물이 다기능성 화장품 소재로서 순수한 실리마린 물질보다 활용도가 높을 것으로 판단된다.
본 연구를 통해 발효 엉겅퀴 전초 추출물은 항산화 및 미백활성능이 엉겅퀴 뿌리 및 꽃보다 높으며, 추출물의 농도를 제어하여 항산화능 또는 미백효과를 갖는 화장품용 천연 소재로서의 활용 가능성이 매우 높다고 판단된다.

Acknowledgements

이 논문은 2017학년도 안동대학교 연구비에 의하여 연구되었음.

Figure 1.

Phylogenetic analysis of BHN-LAB105 and related Lactobacilli based on 16S rRNA gene sequence comparisons.

Lactobacillus rhamnosus BHN-LAB105 was isolated from Kimchi, used for the fermentation of Cirsium japonicum. The strain was identified by the paper disc method with approximately 200 strains. The sequences of isolated strains were compared with the sequences available from the GenBank database. L. rhamnosus, Lactobacillus rhamnosus.
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Figure 2.

The DPPH radical scavenging activity of fermented roots, flowers, and whole thistle (Cirsium japonicum) extracts with each Lactobacilli.

L-ascorbic acid was used as a positive control, and all test samples were measured at a concentration of 1,000 ppm. DPPH radical scavenging activity was measured at 517 nm. The thistle roots’ extract showed a DPPH radical scavenging activity of 36.55% before fermentation and 55.4% after fermentation, and thistle flowers’ extract showed an activity of 82.7% before fermentation and 93.08% after fermentation. Further, the whole thistle extract showed an activity of 65.77% before fermentation and 69.01% after fermentation. Consequently the DPPH radical scavenging activity of thistle extracts were increased overall after fermentation. Thus, the overall DPPH radical scavenging activity of thistle extracts increased after fermentation. Percent scavenging of the DPPH free radical was quantified compared to the control ( **p<0.01, * p<0.05). “-”, non-fermented extracts; “+”, fermented extracts; DPPH, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl.
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Figure 3.

The tyrosinase inhibition activity of fermented roots, flowers, and whole thistle (Cirsium japonicum) extracts with each Lactobacilli.

All test samples were measured at a concentration of 1,000 ppm. Arbutin was used as a positive control at a concentration of 5,000 ppm. Tyrosinase inhibition activity was measured at 405 nm. The tyrosinase inhibiton activity of thistle roots’ extract was 13.38% before fermentation and 25.70% after fermentation and that of thistle flowers’ extract was 11.89% before fermentation and 21.25% after fermentation. Whole thistle extract showed an activity of 16.03% before fermentation and 26.52% after fermentation. Taken together, tyrosinase inhibition activity increased after fermentation. Percent scavenging of the tyrosinase inhibition activity was quantified compared to the control (**p<0.01, * p<0.05). “–,“ nonfermented extracts; “+,” fermented extracts.
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Figure 4.

The DPPH radical scavenging activity and tyrosinase inhibition activity of silymarin as a standard compound.

The DPPH radical scavenging activity of silymarin (A) was approximately 31.55% at 100% solubility and decreased to 16.39%, 8.01%, and 1.17%, respectively. Conversely, L-ascorbic acid (1,000 ppm) was used as a positive control and showed 87% activity. The tyrosinase inhibiton activity of silymarin (B) was 15.23% at 10% solubility and increased to 28.32%, 38.44%, and 53.13%, respectively. 5,000 ppm of arbutin was used as a positive control and showed a tyrosinase inhibitory activity of 32.46%. DPPH, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl.
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Figure 5.

Quantitative analysis of L. rhamnosus BHN-LAB105 in the fermentation process of thistle using real-time PCR.

The number of microorganism increased up to 8 h after the start of fermentation in thistle roots, flowers and whole thistle extracts. After 10 h of fermentation, it was confirmed that it was maintained as a whole without significant increase or decrease. After 72 h of fermentation, the number of microorganisms remained constant without the disappearance of the number of Lactobacilli. Thus, fermentation was complete. L. rhamnosus, Lactobacillus rhamnosus; PCR, polymerase chain reaction.
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Figure 6.

HPLC analysis of the nonfermented and fermented whole thistle extracts.

The whole thistle was analyzed before and after fermentation. The major component peaks of the whole thistle extract before fermentation (A) were detected at 8.02, 19.31, 21.37, and 31.21 min, and various peaks were detected within 10 min of retention time. The main peaks of the whole thistle extract after fermentation (B) were detected at 2.11, 2.22, and 8.00 min. Unlike the whole thistle extract before fermentation, various peaks were observed within 5 min of retention time. It was deduced that the high molecular weight components were converted into low molecular weight components due to fermentation by Lactobacilli. HPLC, high-performance liquid chromatography.
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Table 1.
Change in total polyphenol and flavonoid contents of thistle (Cirsium japonicum) extracts depending on the fermentation with Lactobacilli.
Total polyphenol contents (μg/ 100 g)
Total flavonoid contents (μg/100 g)
Before fermentation After fermentation Before fermentation After fermentation
Roots 60.93 101.86** 69.77 102.00*
Flowers 212.40 128.86** 146.16 160.05
Whole 142.66 188.40* 199.61 210.16*

Total polyphenol contents (μg/100 g) were calculated with gallic acid as standard and flavonoid contents (μg/100 g) were calculated with rutin as a standard (**p <0.01, *p <0.05).

Table 2.
The total polyphenol and flavonoid contents by concentration with silymarin as a standard compound
Total polyphenol contents (μg/100 g) Total flavonoid contents (μg/100 g)
10% 36.958 14.333
25% 72.458 46.555
50% 131.041 68.555
100% 246.250 116.0

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